近年來，為更快地將創(chuàng)新療法帶給患者，加快藥物開發(fā)進(jìn)程已成為生物制藥行業(yè)的主要關(guān)注點(diǎn)。重組中國倉鼠卵巢 (CHO) 細(xì)胞系是單克隆抗體 (mAb) 的主要表達(dá)系統(tǒng)，為了加快生物制藥進(jìn)程，如何提高宿主細(xì)胞外源基因表達(dá)量及穩(wěn)定性水平是個(gè)棘手的熱門話題，目前通常通過將遺傳信息隨機(jī)轉(zhuǎn)基因整合 (RTI：Random Transgene Integration)到宿主細(xì)胞基因組中產(chǎn)生，即通過選擇性標(biāo)記進(jìn)行多輪篩選以獲得具有高表達(dá)水平的克隆。而由于缺乏對(duì)隨機(jī)整合插入位點(diǎn)的控制，部分克隆細(xì)胞系的重組蛋白生產(chǎn)力可能會(huì)隨著時(shí)間的推移而減少，導(dǎo)致細(xì)胞系不穩(wěn)定。因此，RTI代表了一種容易出錯(cuò)且乏味的方法，導(dǎo)致開發(fā)時(shí)間很長(zhǎng)。定點(diǎn)整合 (SSI：Site-Specific Integration) 被確定為 RTI的一種有前途的替代品，因?yàn)樗梢愿焖俚厣筛咝阅芎头€(wěn)定的生產(chǎn)細(xì)胞系，加速藥物開發(fā)進(jìn)程。
RTI技術(shù)與SSI技術(shù)區(qū)別
基于RTI(上圖)與SSI(下圖)的細(xì)胞系開發(fā)過程圖示[1]
在基于RTI的細(xì)胞系開發(fā)過程中，攜帶轉(zhuǎn)基因遺傳信息和選擇標(biāo)記的線性化質(zhì)粒穩(wěn)定地整合到CHO宿主細(xì)胞的基因組中。因此，具有不可預(yù)測(cè)結(jié)構(gòu)的多拷貝轉(zhuǎn)基因整合將發(fā)生在未知基因組位點(diǎn)上，代謝選擇后產(chǎn)生的細(xì)胞庫顯示出高水平的基因組和表型多樣性。對(duì)于基于SSI的CLD，能夠在基因組的特定位點(diǎn)精確插入或整合外源DNA片段，從而實(shí)現(xiàn)對(duì)特定基因的添加、刪除或替換，可使得細(xì)胞庫顯示出較低的表型異質(zhì)性。相比于RTI，SSI具有高整合效率、外源基因可實(shí)現(xiàn)精確定位、基因表達(dá)具有一致性、減少位置效應(yīng)使得基因表達(dá)受控、提高細(xì)胞株的安全性及簡(jiǎn)化篩選流程等優(yōu)勢(shì)。
常見的SSI技術(shù)方法
1、 CRISPR-Cas系統(tǒng)：
利用CRISPR-Cas9或其他變體，結(jié)合特異性向?qū)NA(sgRNA)，在基因組中特定位置切割DNA，并通過同源重組修復(fù)(HDR)或非同源末端連接(NHEJ)插入外源DNA。
2、 轉(zhuǎn)座酶系統(tǒng)：
如Sleeping Beauty、piggyBac轉(zhuǎn)座子系統(tǒng)，通過轉(zhuǎn)座酶在特定位置插入外源基因。
3、 重組(整合)酶系統(tǒng)：
如BxB1、Cre-LoxP、FLP-FRT和PhiC31等系統(tǒng)，通過特異性識(shí)別序列進(jìn)行重組，實(shí)現(xiàn)外源DNA的整合。
重組酶系統(tǒng)
01 BxB1整合酶定點(diǎn)整合外源基因
Gaidukov L, Wroblewska L等人[2]2018年發(fā)表于Nucleic Acids Research的文章，確定了21個(gè)支持轉(zhuǎn)基因穩(wěn)定長(zhǎng)期表達(dá)的新基因組位點(diǎn)，然后在選定的位點(diǎn)構(gòu)建了包含一個(gè)、兩個(gè)或三個(gè)“著陸墊"重組位點(diǎn)的細(xì)胞系。通過在每個(gè)位點(diǎn)使用高效的BxB1重組酶以及不同的選擇標(biāo)記，將重組酶介導(dǎo)的異源DNA插入到選定的位點(diǎn)，包括通過單次轉(zhuǎn)染靶向所有三個(gè)位點(diǎn)。使用這種方法可控地整合多達(dá)9個(gè)拷貝的單克隆抗體，代表21個(gè)轉(zhuǎn)錄單元中約100 kb的異源DNA。由于整合針對(duì)預(yù)先驗(yàn)證的位點(diǎn)，重組蛋白表達(dá)在數(shù)周內(nèi)保持穩(wěn)定，并且整合有效載荷中抗體盒的額外拷貝導(dǎo)致抗體表達(dá)線性增加?？傮w而言，該多拷貝位點(diǎn)特異性整合平臺(tái)允許將大量DNA可控且可重復(fù)地插入穩(wěn)定的基因組位點(diǎn)，在哺乳動(dòng)物合成生物學(xué)、重組蛋白生產(chǎn)和生物制造方面具有廣泛的應(yīng)用。
BxB1整合酶定點(diǎn)整合外源基因
02 FLP/FRT重組酶定點(diǎn)整合外源基因
Feary M, Moffat MA等人[3]在2021年發(fā)表于Biotechnology Progress的文章， 將Fer1L4位點(diǎn)與CHOK1SV谷氨酰胺合成酶敲除 (GS-KO) 宿主相結(jié)合，創(chuàng)建了一個(gè)改進(jìn)的CHOK1SV GS-KO 定點(diǎn)整合表達(dá)系統(tǒng)。CHOK1SV GS-KO SSI宿主是通過同源定向整合Fer1L4基因中不相容的Frt序列的靶向著陸墊創(chuàng)建的，靶向載體包含無啟動(dòng)子GS表達(dá)盒和mAb表達(dá)盒，兩側(cè)是與宿主細(xì)胞系中著陸墊兩側(cè)的等效位點(diǎn)兼容的Frt 位點(diǎn)。
FLP/FRT重組酶定點(diǎn)整合外源基因圖示
03 Cre/Lox重組酶定點(diǎn)整合外源基因
Zhou M, Crawford Y等人[4]在2021年發(fā)表于Biotechnology Progress的文章，利用Cre/Lox重組酶介導(dǎo)的盒式交換(RMCE)將表達(dá)抗體的盒引入預(yù)定位點(diǎn)，建立了CHO-K1-M衍生的SSI宿主細(xì)胞。兩個(gè)SSI宿主細(xì)胞都包含一個(gè)表達(dá)GFP的著陸墊，兩側(cè)是兩個(gè)不兼容的LoxP重組位點(diǎn)(L3和2L)。此外，在GFP著陸墊中插入了第三個(gè)不相容的LoxP位點(diǎn)(LoxFAS)，以實(shí)現(xiàn)基于雙質(zhì)粒的創(chuàng)新RMCE策略，其中兩個(gè)獨(dú)立的載體可以同時(shí)靶向單個(gè)位點(diǎn)。
Cre/Lox重組酶定點(diǎn)整合外源基因圖示
目前，已有一些制藥企業(yè)(武田制藥、羅氏、強(qiáng)生等)利用智能定點(diǎn)整合技術(shù)優(yōu)化其生物藥物的生產(chǎn)流程，包括開發(fā)穩(wěn)定細(xì)胞株用于大規(guī)模生產(chǎn)。而利用整合酶定點(diǎn)整合外源基因的方式對(duì)于國內(nèi)制藥企業(yè)來說目前還是處于萌芽階段。但定點(diǎn)整合技術(shù)對(duì)抗體藥物開發(fā)帶來的前景是可預(yù)期的，眾多生物制藥企業(yè)一直期盼能盡快將定點(diǎn)整合應(yīng)用于自身平臺(tái)中，加速細(xì)胞株的開發(fā)。
案例分享(以重組酶系統(tǒng)為例)
通過定點(diǎn)整合技術(shù)，將目標(biāo)基因序列通過同源重組的方式轉(zhuǎn)染到已經(jīng)通過前期篩選驗(yàn)證過的活躍位點(diǎn)當(dāng)中，構(gòu)建均一細(xì)胞池。其首先需要構(gòu)建平臺(tái)細(xì)胞，利用報(bào)告基因(如GFP 等) 篩選得到宿主細(xì)胞基因組中的高表達(dá)位點(diǎn)，之后利用重組酶的特異性，實(shí)現(xiàn)將目標(biāo)產(chǎn)品基因插入在該表達(dá)量高、質(zhì)量和表達(dá)量穩(wěn)定的宿主細(xì)胞基因組位點(diǎn)，再利用Cytena克隆篩選單細(xì)胞打印系統(tǒng)，獲得穩(wěn)定及高產(chǎn)的單克隆細(xì)胞株。
定點(diǎn)整合單克隆篩選流程
細(xì)胞類型：CHO-K1
細(xì)胞狀態(tài)：35%陽性率；80%活率
單細(xì)胞挑選設(shè)備：Cytena克隆篩選單細(xì)胞打印系統(tǒng)，對(duì)照組：FACS
單細(xì)胞、單克隆率：
通過無熒光轉(zhuǎn)化子同源同組，細(xì)胞樣品內(nèi)有帶有熒光的母細(xì)胞也有無熒光即轉(zhuǎn)化子同組成功的目的細(xì)胞，12天后采用Cytena克隆篩選單細(xì)胞打印系統(tǒng)進(jìn)行無熒光細(xì)胞鋪板(只分選非熒光的細(xì)胞)，單細(xì)率約為85%，克隆恢復(fù)率約為20%，而對(duì)照組流式由于分選過程對(duì)單細(xì)胞狀態(tài)及活力造成損傷，后續(xù)單細(xì)胞難以恢復(fù)成克隆。此流程可以省去minipool與有限稀釋的環(huán)節(jié)，加快開發(fā)流程，值得一提的是，用定點(diǎn)整合方式，經(jīng)單細(xì)胞打印系統(tǒng)分選獲得的單克隆，后續(xù)產(chǎn)量>5g/L，約為隨機(jī)整合表達(dá)量的1.5-2倍，此流程可降低開發(fā)時(shí)間和成本，提升開發(fā)效能，大大縮短整個(gè)工藝開發(fā)及IND申報(bào)時(shí)間。
智能定點(diǎn)整合技術(shù)在單克隆細(xì)胞株篩選中具有高效、精確和安全等顯著優(yōu)勢(shì)，當(dāng)然其也面臨技術(shù)復(fù)雜、成本高以及潛在脫靶效應(yīng)等挑戰(zhàn)，選擇使用SSI技術(shù)需綜合考慮實(shí)驗(yàn)?zāi)康?、成本和技術(shù)能力等因素。
參考資料
[1] Schmieder V , Fieder J , Drerup R ,et al.Towards maximum acceleration of monoclonal antibody development: Leveraging transposase-mediated cell line generation to enable GMP manufacturing within 3 months using a stable pool[J].Journal of Biotechnology, 2022(349-):349.DOI:10.1016/j.jbiotec.2022.03.010.
[2] A multi-landing pad DNA integration platform for mammalian cell engineering. Nucleic Acids Res.Gaidukov L, Wroblewska L, Teague B, Nelson T, Zhang X, Liu Y, Jagtap K etc.(2018)
[3]CHOK1SV GS-KO SSI expression system: A combination of the Fer1L4 locus and glutamine synthetase selection. Biotechnol Prog.Feary M, Moffat MA, Casperson GF, Allen MJ, Young RJ.(2021)
[4]Development of a targeted integration Chinese hamster ovary host directly targeting either one or two vectors simultaneously to a single locus using the Cre/Lox recombinase-mediated cassette exchange system. Biotechnol Prog. Ng D, Zhou M, Zhan D, Yip S, Ko P, Yim M, etc.(2021)
